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關(guān)于Biocoll細(xì)胞分離液的正確打開(kāi)方式

更新時(shí)間:2021-09-10  |  點(diǎn)擊率:1090
   Biocoll細(xì)胞分離液用于形成連續(xù)或者不連續(xù)梯度。生物學(xué)友好:低滲性,無(wú)毒性,無(wú)菌級(jí),保證*的細(xì)胞活性和完整的形態(tài),同時(shí)分離液處理不會(huì)影響下游工藝。
  當(dāng)顆粒懸浮液被離心后,沉降速度和離心力是成比例的。溶液的物理性質(zhì)也會(huì)影響沉降速率。在一個(gè)固定的離心力和液體粘度下,沉降速率和顆粒大小以及其自身密度和周?chē)橘|(zhì)的密度差相關(guān)。
  Biocoll細(xì)胞分離液的配置與使用方法是什么呢?
  1、不同濃度(密度)分離液的制備: 先用9份分離液與1份8.5% NaCl混合達(dá)到生理性滲透壓,然后用生理溶液(0.85% NaCl)稀釋到所需濃度。
  2、不連續(xù)密度梯度分離液層的制備: 先將試管壁用牛血清濕潤(rùn),除去多余血清,這種預(yù)處理可使逐層疊加的分離液平穩(wěn)沿管壁流下,使形成滿意的界面。在制備過(guò)程中一般用長(zhǎng)針頭注射器從高密度向低密度逐層放置,有時(shí)相鄰兩層分離液比重相差不大時(shí),可將分離液放入注射器中,小針頭斜面緊貼管壁,任其自然慢慢流下。
  3、裝樣:樣品體積和細(xì)胞濃度根據(jù)不同細(xì)胞而異,一般加樣體積不宜過(guò)大,細(xì)胞濃度也不可過(guò)高,否則會(huì)影響細(xì)胞的分離和回收。
  4、離心:一般采用離心力為400g,時(shí)間20~25min。由于多層分離液之間密度差別不大,因此離心機(jī)加速、降速時(shí)要慢,要平穩(wěn)。
  5、取樣:當(dāng)所要分離的細(xì)胞絕大部分在兩層的界面時(shí),可逐層去除分離液后收集界面部位的細(xì)胞;有時(shí)大部分細(xì)胞位于分離液層中,則需要逐層收集。收獲含有分離液的細(xì)胞經(jīng)2次洗滌后可供培養(yǎng)或檢測(cè)用。
  好了,以上便是關(guān)于Biocoll細(xì)胞分離液的相關(guān)內(nèi)容介紹了。
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